1 主题内容与适用范围
本标准规定了植物、动物甲状腺中碘-131的分析方法。
本标准适用于植物、动物甲状腺样品中碘-131含量分析。Β探测下限对植物为0.17Bq/kg,对动物甲状腺为6×10-3Bq/g。Γ探测下限对植物为0.01Bq/kg,对动物甲状腺为8×10-3Bq/g。对裂变核素90Sr-90Y、106Ru-106Rh、137Cs、95Zr-95Nb、141Ce-141Pr以及总裂片的去污系数均在104以上。
2 方法提要
植物样品、动物甲状腺,用氢氧化物固定碘,过氧化氢助灰化,水浸取,四氯化碳萃取,水反萃,碘化银沉淀,用低本底
β测量装置或低本底γ谱仪测量。
3 试剂
所用试剂,除特别注明者外,均使用符合国家标准的分析纯试剂和蒸馏水或同等纯度的水。
3.1 碘载体溶液
3.1.1 配制
溶解13.070g碘化钾于蒸馏水中,转入1L容量瓶。加少许无水碳酸钠,稀释至刻度。碘的浓度为10mg/mL。
3.1.2 标定
在6个100mL烧杯中,分别用移液管吸取5mL碘载体溶液(3.1.1),加50mL蒸馏水,搅拌下滴加浓硝酸(3.6),溶液呈金黄色,加10mL硝酸银溶液(3.7)。加热至微沸,冷却后用G4玻璃砂坩埚抽滤。依次用5mL水和5mL无水乙醇各洗三次。在烘箱内110℃下烘干,冷却后称重。计算碘的浓度。
3.2 131I参考溶液:核纯;
3.3 四氯化碳(CCl4):99.5%;
3.4 亚硝酸纳溶液(NaNO2):5mol/L;
3.5 过氧化氢(H2O2):30%;
3.6 硝酸(HN03):ρ=1.40g/mL;
3.7 硝酸银溶液(AgNO3):1%(m/m);
3.8 亚硫酸氢钠溶液(NaHSO3):5%(m/m);
3.9 2mol/L氢氧化钠+2mol/L氢氧化钾混合溶液(3+2);
3.10 氢氧化钠溶液:c(NaOH)=1m0l/L。
4 仪器和设备
4.1 低本底β测量装置:
对铯-137平面源测量100min,置信度为95%时,最小探测限0.05Bq;
4.2 低本底γ谱仪或γ测量装置:
对单一的铯-137薄源测量1000min,置信度为95%时,最小探测限0.1Bq;
4.3 高额热合机;
4.4 玻璃可拆式漏斗:见附录A(补充件)中图A1;
4.5 不锈钢压源模具:见附录A(补充件)中图A2;
4.6 封源铜圈:见附录A(补充件)中图A3;
4.7 研钵锤;
4.8 瓷蒸发皿:750~600mL。
5 采样与样品制备
5.1 取样
按国家有关环境辐射监测中生物采样的基本规定(HB)执行。
5.2 试样制备
5.2.1 植物样品
5.2.1.1
将采集的各种植物样品,称取250g鲜样,放入750mL瓷蒸发皿中。加20mg碘载体,并按1g样品加入1mL混合溶液(3.9),搅拌均匀。
5.2.1.2
样品在电炉上蒸干后,将瓷蒸发皿转移在450℃马福炉内灰化1h。冷却、研碎,用30%过氧化氢湿润后完全蒸干,放入马福炉内450℃灰化30min。如灰仍有明显的碳粒,再加入助灰化剂过氧化氢(3.5),继续在马福炉内450℃灰化,宜至样品呈灰白色。
5.2.2 动物甲状腺
称58甲状腺样品的腺体组织。剪碎,置于60mL瓷蒸发皿中。加入10mg碘载体和10mL混合碱溶液(3.9)。搅拌均匀,样品按(5.2.1.2)步骤灰化。
6 分析步骤
6.1 浸取
将灰样转入到100mL离心管,每次用30mL水浸取三次。离心,上清液转移到250mL分液漏斗中。
6.2 萃取
向分液漏斗中加入20mL四氯化碳(3.3),加2mL亚硝酸钠溶液(3.4),逐渐加入浓硝酸,调pH为1。振荡2min(注意放气),静置分相。有机相转移到100mL分液漏斗中。用15mL和5mL四氯化碳分别进行第二次、第三次萃取。各振荡2min,静置后合并有机相。
6.3 水洗
用等体积蒸馏水洗涤有机相,振荡2min,静置分相。有机相转入另一个分液漏斗中,弃水相。
6.4 反萃
在有机相中加等体积的蒸馏水,加亚硫酸氢钠溶液(3.8)8滴。振荡2min(注意放气)。紫色消退,静置分相。弃有机相。水相移入100mL烧杯中。
6.5 沉淀
将上述烧杯加热至微沸,除净剩余的四氯化碳。冷却后,在搅拌下滴加浓硝酸(3.6),当溶液呈金黄色时,立即加入6mL硝酸银溶液(3.7)。加热至微沸,取下冷却至室温。
6.6 制源
将碘化银沉淀转入垫有已恒重滤纸的玻璃可拆式漏斗(4.4)抽滤。用蒸馏水和乙醇各洗三次。取下载有沉淀的滤纸,放上不锈钢压源模具(4.5),置烘箱中,于110℃烘干15min。在干燥器中冷却后称重。计算化学产额。6.7
封源
将沉淀源夹在两层质量厚度为3mg/cm2的塑料膜中间,放好封源铜圈(4.6)。热合机刀(4.3)压在封源铜;圈上。加热5s,粘牢后取下样品源,剪齐外缘。待测。6.8
测量和计算6.8.1 β测量
6.8.1.1 绘制自吸收曲线
取0.1mL适当活度的碘-131参考溶液(3.2)滴在不锈钢盘内。加1滴碱溶液(3.10),使其慢慢烘干,制成与样品测定条件一致的薄源。在低本底β测量装置(4.1)上测量,其放射性活度为I0。
取6个100mL烧杯分别加入0.5,1.0,1.5,2.0,2.5,3.0mL碘载体溶液(3.1)。各加入0.1mL碘-131参考溶液(3.2),按6.6~6.7条操作制源。将薄源和制备的6个沉淀源,同时在低本底β测量装置上测定放射性活度。各源的放射性活度经化学产额校正为I,以I0。为标准,求出不同样品厚度的碘化银沉淀源I的自吸收系数E。然后,以自吸收系数为纵坐标,以碘化银沉淀源质量厚度为横坐标,在方格坐标纸上绘制自吸收曲线。
6.8.1.2 仪器探测效率
用已知准确活度的铯-137参考溶液制备薄源,用于测定β探测效率。
6.8.1.3 计算
用公式(1)计算试样中碘-131放射性活度:
式中:Aβ——131I放射性活度,Bq/kg或g;
N0——试样测得的计数率,计数/s;
Nb——试样空白的本底计数率,计数/s;
ηβ——β探测效率;
E——131I的自吸收系数;
Y——化学产额;
t——采样到测量的时间间隔;
W——所测试样的重量,kg或g;
λ——131I的衰变常数。
6.8.2 γ测量
用低本底γ谱仪(4.2)测量0.364MeV全能峰的计数率。植物、动物甲状腺试样中碘-131放射性活度计算公式(2)如下:
式中:Ar——131I放射性活度,Bq/kg或g;
Nc——0.364MeV全能峰的计数率,计数/s;
Nb——0.364MeV全能峰下相应的本底计数率,计数/s;
ηr——谱仪对0.364MeV左右(φ20平面薄膜源)全能峰的探测效率;
K——0.364MeV全能峰的分支比。
6.9 空白试验
每当更换试剂时,必须进行空白试验,样品数不能少于6个。取未被污染的植物样250g,或羊甲状腺5g。按5.2.1~6.7条操作,并计算空白试样平均计数率和标准偏差。
7 精密度
本精密度数据是在1989年4月至10月,由三个实验室对4个水平的试样所做的实验确定的。每个实验室对4个水平各做四个平行测试样品。
表1 植物样精密度测试结果
Bq
水平1) |
I |
II |
III |
均值m |
7.05 |
49.93 |
108.12 |
重复性r |
0.95 |
5.99 |
6.97 |
再现性R |
2.3 |
15.23 |
25.96 |
注:1)本底水平原始测试数据结果均小于探测限不再列表。
表2 羊甲状腺精密度测试结果 Bq
水平1) |
I |
II |
III |
均值m |
6.57 |
48.17 |
109.88 |
重复性r |
1.74 |
5.46 |
11.83 |
再现性R |
2.8 |
5.63 |
17.47 |
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注:1)
本底水平原始测试数据结果均小于探测限不再列表。
附录B 正确使用标准的说明
(参考件)
B1 灰化温度必须低于450℃。
B2 动物甲状腺必须进行样品自身的稳定碘含量的测定。相应地取其他腺体(如颌下腺等)为对照样。
并在计算碘的化学回收率时将其扣除。否则会使碘的化学回收率偏高。
B3
按公式(B1)决定样品测量的时间tc(min):
式中:tc——样品计数时间,min;
Nc——样品源加本底的计数率,计数/min;
Nb——本底计数率,计数/min;
N——样品源净计数率,计数/min;
S——预定的相对标准误差。
B4
碘化银源必须用塑料薄膜封源。膜的质量厚度为3mg/cm2。膜的本底在仪器涨落范围内。
B5
如果没有高频热合机条件,可将沉淀源夹在塑料膜内,盖一层黄蜡绸,用5W电烙铁沿沉淀源周围画一圈封合,剪齐外缘,待测。
B6 关于用铯-137薄源代替碘-131源测定β探测效率的问题。按铯-137β衰变的分支比,加权以后的β粒子平均最大能量值为0.547MeV,碘-131β粒子平均最大能量值为0.576MeV,二者相对偏差为4.9%。由此引起探测效率(包括空气层自吸收、反散射等)偏差在实验误差范围之内,因此用铯-137薄源刻度β探测效率是可行的。 |